www.wikidata.de-de.nina.az

Ranavirus TEM Aufnahme von Ranaviren an der Außenmembran der Wirtszelle bevor sie diese per Knospung verlassen Systemati

Ranavirus

Ranavirus

TEM-Aufnahme von Ranaviren
an der Außenmembran der Wirtszelle
bevor sie diese per Knospung verlassen.

Systematik
Taxonomische Merkmale
Genom: dsDNA linear
Baltimore: Gruppe 1
Symmetrie: ikosaedrisch
Hülle: vorhanden
Wissenschaftlicher Name
Ranavirus
Links
NCBI Taxonomy: 10492
ViralZone (Expasy, SIB): 585
ICTV Taxon History: 201903731

Ranavirus ist eine Gattung von Riesenviren (Nucleocytoviricota, NCLDVs) aus der Familie der Iridoviridae, Unterfamilie Alphairidovirinae.Ranavirus ist die einzige Gattung in dieser Familie, deren Viren sowohl für Amphibien als auch Reptilien ansteckend sind. Wie auch die beiden anderen Gattungen Lymphocystivirus und Megalocytivirus der Unterfamilie Alphairidovirinae können Viren der Gattung Ranavirus auch Echte Knochenfische (Teleostei) infizieren.

TEM-Aufnahme einer von Ranaviren infizierten Zelle, die sich im Zytoplasma ansammeln und neben dem Zellkern Klumpen bilden

Auswirkungen auf die Ökologie Bearbeiten

Die Ranaviren sind wie die Megalocytiviren eine Gruppe eng verwandter dsDNA-Viren, deren Bedeutung immer mehr zunimmt. Sie verursachen systemische Erkrankungen bei einer Vielzahl von wilden und kultivierten Süß- und Salzwasserfischen. Wie bei Megalocytiviren sind Ranavirus-Ausbrüche in Aquakulturen von erheblicher wirtschaftlicher Bedeutung, da Tierseuchen zu beträchtlichem Verlust oder gar Massensterben von Zuchtfischen führen können. Im Gegensatz zu den Megalocytiviren wurden Ranavirus-Infektionen bei Amphibien als ein Faktor für den weltweiten Rückgang der Amphibienpopulationen in Betracht gezogen. Der Einfluss von Ranaviren auf Amphibienpopulationen wurde mit dem des Chytridenpilz Batrachochytrium dendrobatidis, dem Erreger der Chytridiomykose, verglichen. Im Vereinigten Königreich wird angenommen, dass die Schwere der Krankheitsausbrüche aufgrund des Klimawandels (soll heißen: der globalen Erwärmung) zugenommen hat.

Die Vorsilbe von lateinisch Rana ‚Frosch‘ abgeleitet und erinnert an die erste Isolierung eines Ranavirus aus dem Nördlichen Leopardfrosch (Rana pipiens alias Lithobates pipiens) in den 1960er Jahren.

Wirte Bearbeiten

Von den folgenden Reptilienarten ist bekannt, dass sie Ranavirus infiziert werden können:

Aufbau Bearbeiten

Genomkarte von ATV

Ranaviren sind große ikosaedrische DNA-Viren mit einem Durchmesser von etwa 150 nm und einem unsegmentierten linearen dsDNA-Genom von etwa 105 kbp, Es gibt etwa 100 Proteine kodierende Gene.

Das Genom von Frog virus 3 hat eine Länge von 105.903 bp und kodiert voraussichtlich 99 Proteine.

Reproduktionszyklus Bearbeiten

Schemazeichnung zum Replikationszyklus der Gattung Ranavirus

Die Replikation der Ranaviren ist bei der Typspezies Frog virus 3 (FV3) gut untersucht. Die Replikation von FV3 erfolgt bei 12 bis 32 °C. Ranaviren gelangen durch Rezeptor-vermittelte Endozytose in die Wirtszelle. Die Viruspartikel (Virionen) sind unbeschichtet und wandern nach dem Eindringen durch die Endocytose in den Zellkern, wo die virale DNA-Replikation über eine viruskodierte DNA-Polymerase beginnt. Die Virus-DNA verlässt dann den Zellkern und es beginnt die zweite Stufe der DNA-Replikation im Zytoplasma, wobei letztendlich DNA-Concatemere gebildet werden. Die virale DNA wird dann in infektiöse Virionen verpackt.

  • Replikation am Beispiel von Frog virus 3 (FV3)

Auch die Spezies Singapore Grouper Iridovirus (SGIV), Erreger der Krankheit Singapore Grouper Iridovirus Disease (SGIVD) beim Rostflecken-Zackenbarsch (Epinephelus tauvina, en. Greasy grouper [en]) ist inzwischen gut untersucht. Deren Viruspartikel werden in sog. viral assembly sites (VAS) zusammengebaut (assembliert).

  • Replikation am Beispiel von Singapore grouper iridovirus (SGIV)

Das Genom von Ranavirus weist wie bei anderen Iridoviridae terminal redundante DNA auf.

Es wird angenommen, dass die Übertragung von Ranaviren auf mehreren Wegen erfolgt, unter anderem über kontaminiertem Boden, direkten Kontakt, Exposition durch Wasser und Verschlucken von infiziertem Gewebe während der Jagd, Nekrophagie oder Kannibalismus. Ranaviren sind in Gewässern relativ stabil und können außerhalb eines Wirtsorganismus mehrere Wochen oder länger überdauern.

Evolution Bearbeiten

Die Ranaviren scheinen sich aus einem Fischvirus entwickelt zu haben, das anschließend Amphibien und Reptilien infizierte.

Systematik Bearbeiten

Die innere Systematik der Gattung Iridovirus ist mit Stand März 2021 nach ICTV, ergänzt um einige Vorschläge in doppelten Anführungszeichen (nach NCBI, wo nicht anders angegeben):

Ein Zelle des Chinesischen Riesensalamanders (Andrias davidianus), infiziert mit Andrias davidianus ranavirus (ADRV)
  • Spezies Epizootic haematopoietic necrosis virus (alias Epizootic hematopoietic necrosis virus, EHNV)
  • Spezies Frog virus 3 (Fv3, FV3, Typusspezies)
  • Spezies Santee-Cooper ranavirus (SCRV)
EM-Aufnahmen von Virionen des Singapore grouper iridovirus (SGIV) in verschiedenen Stadien.
  • Spezies „Cod iridovirus“ (CoIV)
  • Spezies „Short-finned eel ranavirus“ (SERV)

Es gibt etliche nach ICTV mit Stand März 2021 noch nicht klassifizierten Kandidaten, siehe etwa Halaly et al. (2019).

Einzelnachweise Bearbeiten

  1. ↑ ICTV: ICTV Master Species List 2019.v1, New MSL including all taxa updates since the 2018b release, March 2020 (MSL #35)
  2. ICTV: Iridoviridae. In: ICTV Online (10th) Report. (englisch).
  3. RJ Whittington, JA Becker, MM Dennis: Iridovirus infections in finfish – critical review with emphasis on ranaviruses. In: Journal of Fish Diseases. 33. Jahrgang, Nr. 2, 2010, S. 95–122, doi:10.1111/j.1365-2761.2009.01110.x, PMID 20050967.
  4. A. G. F. Teacher, A. A. Cunningham, T. W. J. Garner: Assessing the long-term impact of Ranavirus infection in wild common frog populations: Impact of Ranavirus on wild frog populations. In: Animal Conservation. 13. Jahrgang, Nr. 5, 10. Juni 2010, S. 514–522, doi:10.1111/j.1469-1795.2010.00373.x (wiley.com).
  5. Stephen J. Price, Trenton W. J. Garner, Richard A. Nichols, François Balloux, César Ayres, Amparo Mora-Cabello de Alba, Jaime Bosch: Collapse of Amphibian Communities Due to an Introduced Ranavirus. In: Current Biology. 24. Jahrgang, Nr. 21, November 2014, S. 2586–2591, doi:10.1016/j.cub.2014.09.028 (elsevier.com).
  6. James K. Jancovich, Jinghe Mao, V. Gregory Chinchar, Christopher Wyatt, Steven T. Case, Sudhir Kumar, Graziela Valente, Sankar Subramanian, Elizabeth W. Davidson, James P. Collins, Bertram L. Jacobs: Genomic sequence of a ranavirus (family Iridoviridae) associated with salamander mortalities in North America. In: Virology. 316. Jahrgang, Nr. 1, 2003, S. 90–103, doi:10.1016/j.virol.2003.08.001, PMID 14599794.
  7. Jesse L. Brunner, Danna M. Schock, Elizabeth W. Davidson, James P. Collins: Intraspecific Reservoirs: Complex Life History and the Persistence of a Lethal Ranavirus. In: Ecology. 85. Jahrgang, Nr. 2, 2004, S. 560, doi:10.1890/02-0374.
  8. Pearman, Peter B., Trenton W. J. Garner: Susceptibility of Italian agile frog populations to an emerging strain of Ranavirus parallels population genetic diversity. In: Ecology Letters. 8. Jahrgang, Nr. 4, 2005, S. 401, doi:10.1111/j.1461-0248.2005.00735.x.
  9. Stephen J. Price, William T. M. Leung, Christopher J. Owen, Robert Puschendorf, Chris Sergeant, Andrew A. Cunningham, Francois Balloux, Trenton W.  J. Garner, Richard A. Nichols: Effects of historic and projected climate change on the range and impacts of an emerging wildlife disease. In: Global Change Biology. 9. Mai 2019, ISSN 1354-1013, doi:10.1111/gcb.14651 (wiley.com).
  10. Harper, Douglas: ‚frog‘, in: Online Etymology Dictionary.
  11. A. Granoff, P. E. Came, K. A. Rafferty: The isolation and properties of viruses from Rana pipiens: their possible relationship to the renal adenocarcinoma of the leopard frog. In: Annals of the New York Academy of Sciences. 126. Jahrgang, Nr. 1, 1965, S. 237–255, doi:10.1111/j.1749-6632.1965.tb14278.x, PMID 5220161, bibcode:1965NYASA.126..237G.
  12. ↑ MJ Gray, DL Miller, JT Hoverman: Ecology and pathology of amphibian ranaviruses. In: Diseases of Aquatic Organisms. 87. Jahrgang, Nr. 3, 2009, S. 243–266, doi:10.3354/dao02138, PMID 20099417.
  13. K. A. Rafferty: The cultivation of inclusion-associated viruses from Lucke tumor frogs. In: Annals of the New York Academy of Sciences. 126. Jahrgang, Nr. 1, 1965, S. 3–21, doi:10.1111/j.1749-6632.1965.tb14266.x, PMID 5220167, bibcode:1965NYASA.126....3R.
  14. First identification of a ranavirus from green pythons (Chondropython viridis), Williamson, Coupar, Middleton, Hengstberger, Gould, Selleck, Wise, Kattenbelt, Cunningham, Lee: First identification of a ranavirus from green pythons (Chondropython viridis). In: Journal of Wildlife Diseases. 38. Jahrgang, Nr. 2, 2002, S. 239–252, doi:10.7589/0090-3558-38.2.239, PMID 12038121.
  15. Benetka V.: First report of an iridovirus (genus Ranavirus) infection in a leopard tortoise (Geochelone pardalis pardalis). In: Vet Med Austria. 94. Jahrgang, 2007, S. 243–248 ( (Memento des Originals vom 12. August 2017 im Internet Archive) [abgerufen am 22. September 2014]).  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.schildkroeten-sfb.ch
  16. A. P. De Matos, M. F. Caeiro, T Papp, B. A. Matos, A. C. Correia, R. E. Marschang: New viruses from Lacerta monticola (Serra da Estrela, Portugal): Further evidence for a new group of nucleo-cytoplasmic large deoxyriboviruses (NCLDVs). In: Microscopy and Microanalysis. 17. Jahrgang, Nr. 1, 2011, S. 101–108, doi:10.1017/S143192761009433X, PMID 21138619, bibcode:2011MiMic..17..101A.
  17. J Mao, RP Hedrick, VG Chinchar: Molecular characterization, sequence analysis, and taxonomic position of newly isolated fish iridoviruses. In: Virology. 229. Jahrgang, Nr. 1, 1997, S. 212–220, doi:10.1006/viro.1996.8435, PMID 9123863.
  18. ↑ A. J. Johnson, A. P. Pessier, E. R. Jacobson: Experimental transmission and induction of ranaviral disease in Western Ornate box turtles (Terrapene ornata ornata) and red-eared sliders (Trachemys scripta elegans). In: Veterinary Pathology. 44. Jahrgang, Nr. 3, 2007, S. 285–297, doi:10.1354/vp.44-3-285, PMID 17491069.
  19. Blahak S., Uhlenbrok C. "Ranavirus infections in European terrestrial tortoises in Germany". Proceedings of the 1st International Conference on Reptile and Amphibian Medicine; Munich, Germany. 4–7 March 2010; S. 17–23.
  20. Z. X. Chen, J. C. Zheng, Y. L. Jiang: A new iridovirus isolated from soft-shelled turtle. In: Virus Research. 63. Jahrgang, Nr. 1–2, 1999, S. 147–151, doi:10.1016/S0168-1702(99)00069-6, PMID 10509727.
  21. R. E. Marschang, S Braun, P Becher: Isolation of a ranavirus from a gecko (Uroplatus fimbriatus). In: Journal of Zoo and Wildlife Medicine: Official Publication of the American Association of Zoo Veterinarians. 36. Jahrgang, Nr. 2, 2005, S. 295–300, doi:10.1638/04-008.1, PMID 17323572.
  22. Williams T, Barbosa-Solomieu V, Chinchar GD: "A decade of advances in iridovirus research" S. 173-148. In: Maramorosch K, Shatkin A (Hrsg.): Advances in virus research, Vol. 65, Academic Press, New York, USA, 2005
  23. ↑ VG Chinchar: Ranaviruses (family Iridoviridae) emerging cold-blooded killers. In: Archives of Virology. 147. Jahrgang, Nr. 3, 2002, S. 447–470, doi:10.1007/s007050200000, PMID 11958449.
  24. Disa Bäckström, Natalya Yutin, Steffen L. Jørgensen, Jennah Dharamshi, Felix Homa, Katarzyna Zaremba-Niedwiedzka, Anja Spang, Yuri I. Wolf, Eugene V. Koonin, Thijs J. G. Ettema; Richard P. Novick (Hrsg.): Virus Genomes from Deep Sea Sediments Expand the Ocean Megavirome and Support Independent Origins of Viral Gigantism, in: mBio Vol. 10, Nr. 2, März–April 2019, S. e02497-18, (Memento des Originals vom 29. Juni 2019 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/mbio.asm.org, doi:10.1128/mBio.02497-18, PMC 6401483 (freier Volltext), PMID 30837339, ResearchGate
  25. Heather E. Eaton, Brooke A. Ring, Craig R. Brunetti: The genomic diversity and phylogenetic relationship in the family Iridoviridae. In: Viruses. 2. Jahrgang, Nr. 7, 2010, S. 1458–1475, doi:10.3390/v2071458, PMID 21994690, PMC 3185713 (freier Volltext).
  26. ↑ R Goorha: Frog virus 3 DNA replication occurs in two stages. In: Journal of Virology. 43. Jahrgang, Nr. 2, 1982, S. 519–528, PMID 7109033, PMC 256155 (freier Volltext).
  27. Chinchar VG, Essbauer S, He JG, Hyatt A, Miyazaki T, Seligy V, Williams T: "Family Iridoviridae" S. 145–162, in: Fauquet CM, Mayo MA, Maniloff J, Desselburger U, Ball LA (Hrsg.): Virus Taxonomy, Eighth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses., Academic Press, San Diego, USA, 2005.
  28. Gilda D. Lio-Po, Leobert D. de la Peňa; Kazuya Nagasawa, Erlinda R. Cruz-Lacierda (Hrsg.): Diseases of Cultured Groupers, Southeast Asian Fisheries Development Center (SEAFDEC), Aquaculture Department, Government of Japan Trust Fund, Dezember 2004, ISBN 971-8511-70-9
  29. Virus-Host DB: Singapore grouper iridovirus
  30. ↑ Yang Liu, Bich Ngoc Tran, Fan Wang, Puey Ounjai, Jinlu Wu, Choy L. Hew: Visualization of Assembly Intermediates and Budding Vacuoles of Singapore Grouper Iridovirus in Grouper Embryonic Cells, in: Sci Rep 6, 18696, 4, Januar 2016, doi:10.1038/srep18696
  31. JK Jancovich, M Bremont, JW Touchman, BL Jacobs: Evidence for multiple recent host species shifts among the Ranaviruses (family Iridoviridae). In: J Virol. 84. Jahrgang, Nr. 6, 2010, S. 2636–2647, doi:10.1128/JVI.01991-09, PMID 20042506, PMC 2826071 (freier Volltext).
  32. NCBI: Common midwife toad virus (species)
  33. Zhongyuan Chen, Jianfang Gui, Xiaochan Gao, Chao Pei, Yijiang Hong & Qiya Zhang: Genome architecture changes and major gene variations of Andrias davidianus ranavirus (ADRV), in: Veterinary Research Band 44, Nr. 101, 21. Oktober 2013, doi:10.1186/1297-9716-44-101
  34. ↑ Maya A. Halaly, Kuttichantran Subramaniam, Samantha A. Koda, Vsevolod L. Popov, David Stone, KeithWay, Thomas B. Waltzek: Characterization of a Novel Megalocytivirus Isolated from European Chub (Squalius cephalus), in: MDPI – Viruses 2019, 11, 440; doi:10.3390/v11050440, PDF
  35. ↑ Julien Andreani, Jacques Y. B. Khalil, Emeline Baptiste, Issam Hasni, Caroline Michelle, Didier Raoult, Anthony Levasseur, Bernard La Scola: Orpheovirus IHUMI-LCC2: A New Virus among the Giant Viruses, in: Front. Microbiol., 22. Januar 2018, doi:10.3389/fmicb.2017.02643
  36. Virus-Host DB: European catfish virus
  37. ICTV: European catfish virus, proposal 20162986
  38. Paul M. Hick, Kuttichantran Subramaniam Patrick Thompson Richard J. Whittington and Thomas B. Waltzekb: Complete Genome Sequence of a Bohle iridovirus Isolate from Ornate Burrowing Frogs (Limnodynastes ornatus) in Australia, in: Genome Announcv. 4(4); Juli-August 2016, PMC 4991696 (freier Volltext), PMID 27540051, doi:10.1128/genomeA.00632-16
  39. William H Wilson, Ilana C Gilg, Mohammad Moniruzzaman, Erin K Field, Sergey Koren, Gary R LeCleir, Joaquín Martínez Martínez, Nicole J Poulton, Brandon K Swan, Ramunas Stepanauskas, Steven W Wilhelm: Genomic exploration of individual giant ocean viruses, in: ISME Journal 11(8), August 2017, S. 1736–1745, doi:10.1038/ismej.2017.61, PMC 5520044 (freier Volltext), PMID 28498373

Weblinks Bearbeiten

wikipedia, wiki, deutsches, deutschland, buch, bücher, bibliothek artikel lesen, herunterladen kostenlos kostenloser herunterladen, MP3, Video, MP4, 3GP, JPG, JPEG, GIF, PNG, Bild, Musik, Lied, Film, Buch, Spiel, Spiele
Veröffentlichungsdatum:
RanavirusTEM Aufnahme von Ranaviren an der Aussenmembran der Wirtszelle bevor sie diese per Knospung verlassen SystematikKlassifikation VirenRealm Varidnaviria 1 Reich Bamfordvirae 1 Phylum Nucleocytoviricota 1 Klasse Megaviricetes 1 Ordnung Pimascovirales 1 Familie IridoviridaeUnterfamilie AlphairidovirinaeGattung RanavirusTaxonomische MerkmaleGenom dsDNA linearBaltimore Gruppe 1Symmetrie ikosaedrischHulle vorhandenWissenschaftlicher NameRanavirusLinksNCBI Taxonomy 10492ViralZone Expasy SIB 585ICTV Taxon History 201903731Ranavirus ist eine Gattung von Riesenviren Nucleocytoviricota NCLDVs aus der Familie der Iridoviridae Unterfamilie Alphairidovirinae 2 Ranavirus ist die einzige Gattung in dieser Familie deren Viren sowohl fur Amphibien als auch Reptilien ansteckend sind Wie auch die beiden anderen Gattungen Lymphocystivirus und Megalocytivirus der Unterfamilie Alphairidovirinae konnen Viren der Gattung Ranavirus auch Echte Knochenfische Teleostei infizieren 3 TEM Aufnahme einer von Ranaviren infizierten Zelle die sich im Zytoplasma ansammeln und neben dem Zellkern Klumpen bilden Inhaltsverzeichnis 1 Auswirkungen auf die Okologie 2 Wirte 3 Aufbau 4 Reproduktionszyklus 5 Evolution 6 Systematik 7 Einzelnachweise 8 WeblinksAuswirkungen auf die Okologie BearbeitenDie Ranaviren sind wie die Megalocytiviren eine Gruppe eng verwandter dsDNA Viren deren Bedeutung immer mehr zunimmt Sie verursachen systemische Erkrankungen bei einer Vielzahl von wilden und kultivierten Suss und Salzwasserfischen Wie bei Megalocytiviren sind Ranavirus Ausbruche in Aquakulturen von erheblicher wirtschaftlicher Bedeutung da Tierseuchen zu betrachtlichem Verlust oder gar Massensterben von Zuchtfischen fuhren konnen Im Gegensatz zu den Megalocytiviren wurden Ranavirus Infektionen bei Amphibien als ein Faktor fur den weltweiten Ruckgang der Amphibienpopulationen in Betracht gezogen 4 5 Der Einfluss von Ranaviren auf Amphibienpopulationen wurde mit dem des Chytridenpilz Batrachochytrium dendrobatidis dem Erreger der Chytridiomykose verglichen 6 7 8 Im Vereinigten Konigreich wird angenommen dass die Schwere der Krankheitsausbruche aufgrund des Klimawandels soll heissen der globalen Erwarmung zugenommen hat 9 Die Vorsilbe von lateinisch Rana Frosch abgeleitet 10 und erinnert an die erste Isolierung eines Ranavirus aus dem Nordlichen Leopardfrosch Rana pipiens alias Lithobates pipiens in den 1960er Jahren 11 12 13 Wirte BearbeitenVon den folgenden Reptilienarten ist bekannt dass sie Ranavirus infiziert werden konnen Gruner Baumpython Morelia viridis alias Chondropython viridis 14 Burma Landschildkrote Geochelone platynota Pantherschildkrote Stigmochelys pardalis alias Geochelone pardalis 15 Georgia Gopherschildkrote Gopherus polyphemus Iberische Gebirgseidechse Lacerta monticola 16 Carolina Dosenschildkrote Terrapene carolina carolina 17 Florida Dosenschildkrote Terrapene carolina bauri Westliche Schmuck Dosenschildkrote Terrapene ornata 18 Maurische Landschildkrote Testudo graeca 19 Griechische Landschildkrote Testudo hermanni Agyptische Landschildkrote Testudo kleinmanni Vierzehenschildkrote alias Russische Landschildkrote Testudo horsfieldii Breitrandschildkrote Testudo marginata Rotwangen Schmuckschildkrote Trachemys scripta elegans 18 Chinesische Weichschildkrote Pelodiscus sinensis alias Trionyx sinensis 20 Blattschwanzgeckos der Spezies Uroplatus fimbriatus 21 Aufbau Bearbeiten nbsp Genomkarte von ATVRanaviren sind grosse ikosaedrische DNA Viren mit einem Durchmesser von etwa 150 nm und einem unsegmentierten linearen dsDNA Genom von etwa 105 kbp 22 Es gibt etwa 100 Proteine kodierende Gene 23 Das Genom von Frog virus 3 hat eine Lange von 105 903 bp und kodiert voraussichtlich 99 Proteine 24 Reproduktionszyklus Bearbeiten nbsp Schemazeichnung zum Replikationszyklus der Gattung RanavirusDie Replikation der Ranaviren ist bei der Typspezies Frog virus 3 FV3 gut untersucht Die Replikation von FV3 erfolgt bei 12 bis 32 C 23 Ranaviren gelangen durch Rezeptor vermittelte Endozytose in die Wirtszelle 25 Die Viruspartikel Virionen sind unbeschichtet und wandern nach dem Eindringen durch die Endocytose in den Zellkern wo die virale DNA Replikation uber eine viruskodierte DNA Polymerase beginnt 26 Die Virus DNA verlasst dann den Zellkern und es beginnt die zweite Stufe der DNA Replikation im Zytoplasma wobei letztendlich DNA Concatemere gebildet werden 26 Die virale DNA wird dann in infektiose Virionen verpackt 27 Replikation am Beispiel von Frog virus 3 FV3 nbsp Transmissionselektronenmikroskop Aufnahme einer mit ECV infizierten Zelle und kleines Bild knospenden FV3 Virionen nbsp FV3 infizierte Zelle die Virionen sind uber das Zytoplasma verteilt nbsp FV3 infizierte Zelle mit Kern N Chromatin kondensation viraler Assemblierungs stelle AS para kristallinen en Anordnungen und knospenden Virionen nbsp FV3 infizierte Zelle mit verstreuten Virionen nbsp viralen Assemblierungs stelle mit FV3 Virionen in ver schiedenen Stadien der Assemblierung Inset Membranen evtl aus dem ER Auch die Spezies Singapore Grouper Iridovirus SGIV Erreger der Krankheit Singapore Grouper Iridovirus Disease SGIVD 28 beim Rostflecken Zackenbarsch Epinephelus tauvina en Greasy grouper en 29 ist inzwischen gut untersucht Deren Viruspartikel werden in sog viral assembly sites VAS zusammengebaut assembliert 30 Replikation am Beispiel von Singapore grouper iridovirus SGIV nbsp Replikationszyklus von SGIV innerhalb der Wirtszelle im Detail gt nbsp Kapsid Morphogenese von Singapore Grouper Iridovirus SGIV in einer viral assembly site VAS nbsp Kryo EM Aufnahme von reifen SGIV Virionen mit asymmetrischem haarnadel formigen Komplex auf der einen Seite schwarzer Pfeil Fur die Sicht barkeit ist eine in geeignete Orientierung notig nbsp Virale Akkumulation von SGIV Partikeln zu einer para kristallinen en Anordnung nbsp Die Vesikel mit reifen SGIV Virionen knospen in Vakuolen hinein nbsp SGIV Proteine verformen die Membran und bilden eine spezifische spiralformige Struktur Die Vakuolenmembran wird so zu einem Membrantubulus der das Virion im Inneren der Vakuole enthalt Pfeile links Das Genom von Ranavirus weist wie bei anderen Iridoviridae terminal redundante DNA auf 26 Es wird angenommen dass die Ubertragung von Ranaviren auf mehreren Wegen erfolgt unter anderem uber kontaminiertem Boden direkten Kontakt Exposition durch Wasser und Verschlucken von infiziertem Gewebe wahrend der Jagd Nekrophagie oder Kannibalismus Ranaviren sind in Gewassern relativ stabil und konnen ausserhalb eines Wirtsorganismus mehrere Wochen oder langer uberdauern 12 Evolution BearbeitenDie Ranaviren scheinen sich aus einem Fischvirus entwickelt zu haben das anschliessend Amphibien und Reptilien infizierte 31 Systematik BearbeitenDie innere Systematik der Gattung Iridovirus ist mit Stand Marz 2021 nach ICTV erganzt um einige Vorschlage in doppelten Anfuhrungszeichen nach NCBI wo nicht anders angegeben 1 Familie IridoviridaeUnterfamilie AlphairidovirinaeGattung RanavirusSpezies Ambystoma tigrinum virus ATV dd dd nbsp Ein Zelle des Chinesischen Riesensalamanders Andrias davidianus infiziert mit Andrias davidianus ranavirus ADRV Spezies Common midwife toad virus alias Common midwife toad ranavirus CMTV 32 Andrias davidianus ranavirus ADRV 33 Pelophylax esculentus virus Pike perch iridovirus Rana esculenta virus Testudo hermanni ranavirus 34 35 Tortoise ranavirus ToRV1 34 Spezies Epizootic haematopoietic necrosis virus alias Epizootic hematopoietic necrosis virus EHNV 30 European catfish virus ECV 36 37 35 European sheatfish virus ESV z B beim Europaischen WelsSpezies Frog virus 3 Fv3 FV3 Typusspezies Bohle iridovirus BIV 38 German gecko ranavirus GGRV 34 Giant salamander iridovirus GSIV 30 Pike perch iridovirus PPIV 34 Rana grylio iridovirus RGV 34 Soft shelled turtle iridovirus STIV 34 Tiger frog virus alias Rana tigrina ranavirus Tiger frog ranavirus TFV 35 34 Spezies Santee Cooper ranavirus SCRV dd dd dd nbsp EM Aufnahmen von Virionen des Singapore grouper iridovirus SGIV in verschiedenen Stadien Spezies Singapore grouper iridovirus SGV SGIV 39 Grouper iridovirus GIV 34 Spezies Cod iridovirus CoIV 34 Ranavirus maximus Rmax Spezies Short finned eel ranavirus SERV 34 35 dd dd dd Es gibt etliche nach ICTV mit Stand Marz 2021 noch nicht klassifizierten Kandidaten siehe etwa Halaly et al 2019 34 Einzelnachweise Bearbeiten a b c d e f ICTV ICTV Master Species List 2019 v1 New MSL including all taxa updates since the 2018b release March 2020 MSL 35 ICTV Iridoviridae In ICTV Online 10th Report Abgerufen im 1 Januar 1 englisch RJ Whittington JA Becker MM Dennis Iridovirus infections in finfish critical review with emphasis on ranaviruses In Journal of Fish Diseases 33 Jahrgang Nr 2 2010 S 95 122 doi 10 1111 j 1365 2761 2009 01110 x PMID 20050967 A G F Teacher A A Cunningham T W J Garner Assessing the long term impact of Ranavirus infection in wild common frog populations Impact of Ranavirus on wild frog populations In Animal Conservation 13 Jahrgang Nr 5 10 Juni 2010 S 514 522 doi 10 1111 j 1469 1795 2010 00373 x wiley com Stephen J Price Trenton W J Garner Richard A Nichols Francois Balloux Cesar Ayres Amparo Mora Cabello de Alba Jaime Bosch Collapse of Amphibian Communities Due to an Introduced Ranavirus In Current Biology 24 Jahrgang Nr 21 November 2014 S 2586 2591 doi 10 1016 j cub 2014 09 028 elsevier com James K Jancovich Jinghe Mao V Gregory Chinchar Christopher Wyatt Steven T Case Sudhir Kumar Graziela Valente Sankar Subramanian Elizabeth W Davidson James P Collins Bertram L Jacobs Genomic sequence of a ranavirus family Iridoviridae associated with salamander mortalities in North America In Virology 316 Jahrgang Nr 1 2003 S 90 103 doi 10 1016 j virol 2003 08 001 PMID 14599794 Jesse L Brunner Danna M Schock Elizabeth W Davidson James P Collins Intraspecific Reservoirs Complex Life History and the Persistence of a Lethal Ranavirus In Ecology 85 Jahrgang Nr 2 2004 S 560 doi 10 1890 02 0374 Pearman Peter B Trenton W J Garner Susceptibility of Italian agile frog populations to an emerging strain of Ranavirus parallels population genetic diversity In Ecology Letters 8 Jahrgang Nr 4 2005 S 401 doi 10 1111 j 1461 0248 2005 00735 x Stephen J Price William T M Leung Christopher J Owen Robert Puschendorf Chris Sergeant Andrew A Cunningham Francois Balloux Trenton W J Garner Richard A Nichols Effects of historic and projected climate change on the range and impacts of an emerging wildlife disease In Global Change Biology 9 Mai 2019 ISSN 1354 1013 doi 10 1111 gcb 14651 wiley com Harper Douglas frog in Online Etymology Dictionary A Granoff P E Came K A Rafferty The isolation and properties of viruses from Rana pipiens their possible relationship to the renal adenocarcinoma of the leopard frog In Annals of the New York Academy of Sciences 126 Jahrgang Nr 1 1965 S 237 255 doi 10 1111 j 1749 6632 1965 tb14278 x PMID 5220161 bibcode 1965NYASA 126 237G a b MJ Gray DL Miller JT Hoverman Ecology and pathology of amphibian ranaviruses In Diseases of Aquatic Organisms 87 Jahrgang Nr 3 2009 S 243 266 doi 10 3354 dao02138 PMID 20099417 K A Rafferty The cultivation of inclusion associated viruses from Lucke tumor frogs In Annals of the New York Academy of Sciences 126 Jahrgang Nr 1 1965 S 3 21 doi 10 1111 j 1749 6632 1965 tb14266 x PMID 5220167 bibcode 1965NYASA 126 3R First identification of a ranavirus from green pythons Chondropython viridis Williamson Coupar Middleton Hengstberger Gould Selleck Wise Kattenbelt Cunningham Lee First identification of a ranavirus from green pythons Chondropython viridis In Journal of Wildlife Diseases 38 Jahrgang Nr 2 2002 S 239 252 doi 10 7589 0090 3558 38 2 239 PMID 12038121 Benetka V First report of an iridovirus genus Ranavirus infection in a leopard tortoise Geochelone pardalis pardalis In Vet Med Austria 94 Jahrgang 2007 S 243 248 schildkroeten sfb ch Memento des Originals vom 12 August 2017 im Internet Archive abgerufen am 22 September 2014 nbsp Info Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht gepruft Bitte prufe Original und Archivlink gemass Anleitung und entferne dann diesen Hinweis 1 2 Vorlage Webachiv IABot www schildkroeten sfb ch A P De Matos M F Caeiro T Papp B A Matos A C Correia R E Marschang New viruses from Lacerta monticola Serra da Estrela Portugal Further evidence for a new group of nucleo cytoplasmic large deoxyriboviruses NCLDVs In Microscopy and Microanalysis 17 Jahrgang Nr 1 2011 S 101 108 doi 10 1017 S143192761009433X PMID 21138619 bibcode 2011MiMic 17 101A J Mao RP Hedrick VG Chinchar Molecular characterization sequence analysis and taxonomic position of newly isolated fish iridoviruses In Virology 229 Jahrgang Nr 1 1997 S 212 220 doi 10 1006 viro 1996 8435 PMID 9123863 a b A J Johnson A P Pessier E R Jacobson Experimental transmission and induction of ranaviral disease in Western Ornate box turtles Terrapene ornata ornata and red eared sliders Trachemys scripta elegans In Veterinary Pathology 44 Jahrgang Nr 3 2007 S 285 297 doi 10 1354 vp 44 3 285 PMID 17491069 Blahak S Uhlenbrok C Ranavirus infections in European terrestrial tortoises in Germany Proceedings of the 1st International Conference on Reptile and Amphibian Medicine Munich Germany 4 7 March 2010 S 17 23 Z X Chen J C Zheng Y L Jiang A new iridovirus isolated from soft shelled turtle In Virus Research 63 Jahrgang Nr 1 2 1999 S 147 151 doi 10 1016 S0168 1702 99 00069 6 PMID 10509727 R E Marschang S Braun P Becher Isolation of a ranavirus from a gecko Uroplatus fimbriatus In Journal of Zoo and Wildlife Medicine Official Publication of the American Association of Zoo Veterinarians 36 Jahrgang Nr 2 2005 S 295 300 doi 10 1638 04 008 1 PMID 17323572 Williams T Barbosa Solomieu V Chinchar GD A decade of advances in iridovirus research S 173 148 In Maramorosch K Shatkin A Hrsg Advances in virus research Vol 65 Academic Press New York USA 2005 a b VG Chinchar Ranaviruses family Iridoviridae emerging cold blooded killers In Archives of Virology 147 Jahrgang Nr 3 2002 S 447 470 doi 10 1007 s007050200000 PMID 11958449 Disa Backstrom Natalya Yutin Steffen L Jorgensen Jennah Dharamshi Felix Homa Katarzyna Zaremba Niedwiedzka Anja Spang Yuri I Wolf Eugene V Koonin Thijs J G Ettema Richard P Novick Hrsg Virus Genomes from Deep Sea Sediments Expand the Ocean Megavirome and Support Independent Origins of Viral Gigantism in mBio Vol 10 Nr 2 Marz April 2019 S e02497 18 PDF Memento des Originals vom 29 Juni 2019 im Internet Archive nbsp Info Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht gepruft Bitte prufe Original und Archivlink gemass Anleitung und entferne dann diesen Hinweis 1 2 Vorlage Webachiv IABot mbio asm org doi 10 1128 mBio 02497 18 PMC 6401483 freier Volltext PMID 30837339 ResearchGate Heather E Eaton Brooke A Ring Craig R Brunetti The genomic diversity and phylogenetic relationship in the family Iridoviridae In Viruses 2 Jahrgang Nr 7 2010 S 1458 1475 doi 10 3390 v2071458 PMID 21994690 PMC 3185713 freier Volltext a b c R Goorha Frog virus 3 DNA replication occurs in two stages In Journal of Virology 43 Jahrgang Nr 2 1982 S 519 528 PMID 7109033 PMC 256155 freier Volltext Chinchar VG Essbauer S He JG Hyatt A Miyazaki T Seligy V Williams T Family Iridoviridae S 145 162 in Fauquet CM Mayo MA Maniloff J Desselburger U Ball LA Hrsg Virus Taxonomy Eighth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses Academic Press San Diego USA 2005 Gilda D Lio Po Leobert D de la Pena Kazuya Nagasawa Erlinda R Cruz Lacierda Hrsg Diseases of Cultured Groupers Southeast Asian Fisheries Development Center SEAFDEC Aquaculture Department Government of Japan Trust Fund Dezember 2004 ISBN 971 8511 70 9 Virus Host DB Singapore grouper iridovirus a b c Yang Liu Bich Ngoc Tran Fan Wang Puey Ounjai Jinlu Wu Choy L Hew Visualization of Assembly Intermediates and Budding Vacuoles of Singapore Grouper Iridovirus in Grouper Embryonic Cells in Sci Rep 6 18696 4 Januar 2016 doi 10 1038 srep18696 JK Jancovich M Bremont JW Touchman BL Jacobs Evidence for multiple recent host species shifts among the Ranaviruses family Iridoviridae In J Virol 84 Jahrgang Nr 6 2010 S 2636 2647 doi 10 1128 JVI 01991 09 PMID 20042506 PMC 2826071 freier Volltext NCBI Common midwife toad virus species Zhongyuan Chen Jianfang Gui Xiaochan Gao Chao Pei Yijiang Hong amp Qiya Zhang Genome architecture changes and major gene variations of Andrias davidianus ranavirus ADRV in Veterinary Research Band 44 Nr 101 21 Oktober 2013 doi 10 1186 1297 9716 44 101 a b c d e f g h i j k Maya A Halaly Kuttichantran Subramaniam Samantha A Koda Vsevolod L Popov David Stone KeithWay Thomas B Waltzek Characterization of a Novel Megalocytivirus Isolated from European Chub Squalius cephalus in MDPI Viruses 2019 11 440 doi 10 3390 v11050440 PDF a b c d Julien Andreani Jacques Y B Khalil Emeline Baptiste Issam Hasni Caroline Michelle Didier Raoult Anthony Levasseur Bernard La Scola Orpheovirus IHUMI LCC2 A New Virus among the Giant Viruses in Front Microbiol 22 Januar 2018 doi 10 3389 fmicb 2017 02643 Virus Host DB European catfish virus ICTV European catfish virus proposal 20162986 Paul M Hick Kuttichantran Subramaniam Patrick Thompson Richard J Whittington and Thomas B Waltzekb Complete Genome Sequence of a Bohle iridovirus Isolate from Ornate Burrowing Frogs Limnodynastes ornatus in Australia in Genome Announcv 4 4 Juli August 2016 PMC 4991696 freier Volltext PMID 27540051 doi 10 1128 genomeA 00632 16 William H Wilson Ilana C Gilg Mohammad Moniruzzaman Erin K Field Sergey Koren Gary R LeCleir Joaquin Martinez Martinez Nicole J Poulton Brandon K Swan Ramunas Stepanauskas Steven W Wilhelm Genomic exploration of individual giant ocean viruses in ISME Journal 11 8 August 2017 S 1736 1745 doi 10 1038 ismej 2017 61 PMC 5520044 freier Volltext PMID 28498373Weblinks BearbeitenICTV ICTV Online 10th Report Iridoviridae Expasy Viralzone Ranavirus Ranavirus Net Ranavirus Research Project Viral Diseases of Amphibians viaWeb Archiv Herpetofauna Diseases Southeast Partners in Amphibian and Reptile Conservation SEPARC Disease Task Team Weitere Informationen zu Ranaviren und anderen Krankheitserregern die die Amphibienpopulation beeinflussen einschliesslich des Chytridpilzes Batrachochytrium dendrobatidis und des Salamanderfressers Batrachochytrium salamandrivorans Bsal Chen Li Liqun Wang Jiaxin Liu Yepin Yu Youhua Huang Xiaohong Huang Jingguang Wei Qiwei Qin Singapore Grouper Iridovirus SGIV Inhibited Autophagy for Efficient Viral Replication in Front Microbiol Serie Cell Organelle Exploitation by Viruses During Infection 26 Juni 2020 oi 10 3389 fmicb 2020 01446 Abgerufen von https de wikipedia org w index php title Ranavirus amp oldid 236999586